Un enfoque alternativo para validar la eficacia de limpieza de una toallita limpiadora para la piel.

Envío recibido: 31 de julio de 2024 / Revisado: 13 de septiembre de 2024 / Aceptado: 26 de septiembre de 2024 / Publicado: 1 de octubre de 2024

Abstracto

Una función clave de las toallitas limpiadoras es su eficacia para eliminar la suciedad y la contaminación microbiana de la piel hasta niveles seguros o indetectables, tradicionalmente determinados mediante el método gravimétrico, que se ha reportado como propenso a errores experimentales. Este estudio evalúa la eficacia de una toallita limpiadora a base de agua, WaterWipes® (WaterWipes, UC, Drogheda, Irlanda), para eliminar materia fecal sintética (Feclone™, SiliClone Creations LLC, Havertown, PA, Estados Unidos) y Escherichia coli (NCTC 10538) de la piel de voluntarios, utilizando un dispositivo de análisis dérmico llamado cámara Antera 3D™ (Miravex Ltd., Dublín, Irlanda) y métodos microbiológicos estándar para la detección de la primera. Se aplicó Feclone™ en los antebrazos de los participantes y la cámara Antera 3D™ capturó imágenes detalladas de la superficie de la piel antes y después de la limpieza. Se comprobó que el método de la cámara Antera 3D™ era eficaz para medir la eficiencia de la limpieza, ya que la toallita eliminó todos los restos detectables de Feclone™ aplicado. Se observó que el área total de poros (mm²), el número de poros y el volumen total de poros (mm³) en los participantes de la prueba, tras la limpieza, se redujeron en promedio un 39,05 %, un 34,39 % y un 39,98 %, respectivamente. La toallita eliminó el 99,99 % de E. coli (NCTC 10538) aplicada, según lo medido mediante el método de recuento en placa microbiana. En conclusión, se observó que el método de la cámara Antera 3D™ era eficaz para evaluar la eliminación de Feclone™ aplicado tópicamente.

Palabras clave: toallitas limpiadoras; cámara Antera 3D™; Feclone™; WaterWipes®; eliminación de bacterias

1. Introducción

Las toallitas húmedas pueden describirse como agentes de limpieza y generalmente se dividen en toallitas secas y húmedas, con un aumento en el uso de toallitas húmedas en los últimos años, especialmente en relación con la higiene de bebés y lactantes [ 1 ]. Los estudios muestran que el uso de toallitas húmedas mejora los resultados de la limpieza de pañales de bebés, ofreciendo una limpieza eficaz y reduciendo el eritema de la piel, siendo adecuadas tanto para superficies de piel intactas como dañadas en comparación con el uso de agua y paño [ 2 , 3 , 4 , 5 ]. Las toallitas húmedas para bebés suelen consistir en materiales de lámina base formulados con un tensioactivo limpiador suave, conservantes y agentes amortiguadores de pH. El agua se utiliza generalmente como componente base en las toallitas para bebés con el fin de limpiar la piel sensible de los bebés y los residuos fecales [ 4 , 6 ]. En una reunión de mesa redonda europea se recomendó que las toallitas húmedas diseñadas principalmente para uso infantil no deberían tener el potencial de causar reacciones de sensibilidad cutánea y deberían estar formuladas con ingredientes seguros para un uso prolongado [ 7 ]. Las toallitas húmedas diseñadas para aplicaciones de limpieza y desinfección se someten a pruebas estándar, como pruebas microbiológicas, eficiencia de limpieza, recogida de humedad de la toallita y formulación de loción [ 1 ], y la eficiencia de limpieza se determina tradicionalmente utilizando métodos gravimétricos de limpieza de toallitas (como la técnica de recuperación de chocolate derretido) que se ha informado que son propensos a errores experimentales [ 1 , 8 ].

Por lo tanto, este estudio busca diseñar y evaluar un nuevo método no gravimétrico con potencial uso futuro para evaluar la eficiencia de limpieza de productos de toallitas comerciales nuevos y existentes. El método diseñado implica el uso de una cámara Antera 3D™ conocida por su imagen dérmica en tiempo real, con ventajas tales como la entrega de datos precisos, rápidos y objetivos en diferentes áreas de estudios de la piel y evaluación de productos cosméticos [ 9 , 10 , 11 , 12 ]. La cámara Antera 3D™ (Miravex Ltd., Dublín, Irlanda), bajo la patente europea No. 2400890, funciona según el principio de iluminación de la piel desde múltiples ángulos, con datos de la superficie de la piel reproducidos de manera 3D usando software habilitado para computadora para interpretar la luz reflejada de la superficie de la piel. Los datos de la piel relevantes que se pueden generar con este instrumento incluyen recuentos de poros de la piel, arrugas, rugosidad y análisis de pigmentación [ 13 ]. Los poros de la piel juegan un papel en la liberación de sebo, sudor y desechos celulares de la piel. Se ha informado que el tratamiento de los poros faciales agrandados (con terapias como ultrasonido, luz de banda ancha, radiofrecuencia y láseres fraccionados no ablativos) es una de las principales demandas cosméticas [ 14 ].

El método diseñado se evaluó utilizando WaterWipes® (WaterWipes UC, Drogheda, Irlanda), una marca comercial de toallitas húmedas sin surfactantes elaboradas con ingredientes mínimos. Su composición básica comprende materiales fibrosos sin plástico (láminas humedecidas de tejido spun lace no tejido 100 % viscosa). Las láminas se humedecen con agua ultrapurificada (99,9 %) y extracto de semilla de Citrus grandis (pomelo) al 0,1 % [ 15 ]. Su eficacia de limpieza se probó frente a aplicaciones tópicas de Feclone™ y E. coli en dos ensayos separados con voluntarios humanos. Feclone™ (SiliClone Creations LLC, Havertown, PA, Estados Unidos) es una marca patentada de material fecal artificial simulado con aplicaciones reportadas en el análisis de productos alimenticios, así como en toallitas para la incontinencia y para bebés [ 16 , 17 ]. Se utilizó el método adaptado de la cámara Antera 3DTM para evaluar la eficacia de limpieza de un producto de toallitas específico disponible comercialmente en el ensayo FecloneTM y el método de recuento en placa para el ensayo de E. coli.

2. Materiales y métodos

2.1. Evaluación de la eficacia de limpieza del producto de toallitas para eliminar Feclone™

Este estudio se realizó con la aprobación ética del Comité de Ética de Investigación en Humanos de la Universidad Tecnológica de Münster (HREC-FER-24-004) y se llevó a cabo de acuerdo con la norma BS EN 1500:2013 [ 1 ]. Los criterios de inclusión para el estudio fueron hombres y mujeres mayores de 18 años con piel humana adulta sana, intacta y no sensible, mientras que los criterios de exclusión fueron adultos vulnerables, afecciones cutáneas, sensibilidad cutánea (autoinformada) o piel lesionada en el antebrazo. El panel resultante consistió en 25 voluntarios humanos (18 mujeres y 7 hombres); las muestras e imágenes tomadas se anonimizaron para los participantes. El rango de edad de los participantes en este estudio fue de 18 a 50 años. La investigación se realizó en un entorno controlado en el Laboratorio del Centro de Biotecnología Aplicada de Shannon (MTU, Kerry, Irlanda) con una temperatura ambiente de 25 ± 2 °C y una humedad relativa del 50 ± 5 %.

2.1.1. Preparación de Feclone™

En total, se calentaron 120 ml de agua destilada a 99 °C en un recipiente tapado; simultáneamente, se precalentaron 40 g de Feclone™ durante 5 min utilizando una placa calefactora. Al alcanzar la temperatura deseada, se añadió cuidadosamente el agua caliente al Feclone™ (SiliClone Creations LLC, Havertown, PA, EE. UU.), seguido de una agitación vigorosa durante aproximadamente 20 s con una espátula. A continuación, la mezcla se cubrió con papel de aluminio y se incubó a 99 °C durante un mínimo de 30 min, agitando suavemente la mezcla después de los primeros 10 min. Al finalizar el periodo de incubación, se realizó una última agitación breve antes de dividir la solución caliente en tubos de 50 ml. Los tubos se colocaron a 4 °C hasta su posterior uso.

2.1.2. Aplicación de Feclone™ en el antebrazo humano

Los voluntarios se sentaron con un brazo apoyado en una mesa y el antebrazo expuesto, y se les permitió aclimatarse a las condiciones de la habitación durante 3 minutos. El propósito de este estudio era determinar la eficacia de limpieza de la toallita, por lo que la temperatura de la piel se consideró una prioridad menor. Dentro de una sección de 8 × 8 cm, se aseguró un área de 4 × 4 cm colocando una plantilla sobre el antebrazo del voluntario. Se aplicó una cantidad de 2 g de Feclone™ en el área de 4 × 4 cm y se extendió uniformemente con una espátula. El procedimiento de limpieza consistió en limpiar el área contaminada vertical y horizontalmente de la siguiente manera: de izquierda a derecha con una superficie de la toallita, luego de derecha a izquierda con otra superficie, luego de arriba abajo con una superficie nueva y, finalmente, de abajo arriba con una superficie nueva, todo de la misma hoja.

Se capturó una imagen del área marcada utilizando una cámara Antera 3D™ antes y después de la limpieza, así como inmediatamente después de la aplicación de Feclone™, y se analizó utilizando el software Antera 3D™ (versión 3.1.8) para comparar las condiciones antes y después de la limpieza. El porcentaje de eliminación se calculó utilizando el parámetro de volumen del software, que mide la depresión y la elevación por encima de una superficie de referencia normalizada. El volumen de piel (mm3) después de la limpieza se restó del volumen de piel antes de la aplicación de Feclone™; el valor obtenido se restó del volumen de piel (mm3) con Feclone™ antes de la limpieza y se dividió por el volumen de piel (mm3) con Feclone™ antes de la limpieza. Este valor se multiplicó luego por 100 para calcular el porcentaje de eliminación (fórmula en la Sección 3.1 ) con el resultado obtenido que se encuentra en la Sección 3.1 ( Tabla 1 ).

2.2. Evaluación del impacto de los productos de limpieza en los poros de la piel humana

Este estudio se realizó en el antebrazo desnudo de cada voluntario (25 en total). El área de prueba se marcó en el brazo como se describió anteriormente, de modo que las imágenes de antes y después correspondieran exactamente a la misma área. A continuación, se fotografió el área y se aplicaron 2 g de Feclone™. El procedimiento de limpieza posterior se llevó a cabo como se describe en la Sección 2.1.2 y los resultados obtenidos se pueden encontrar en la Sección 3.2 ( Tabla 2 ). La fórmula utilizada para los diferentes parámetros de poros del software Antera 3D™ (versión 3.1.8) incluye:

Tabla 2. Tabla que muestra el impacto de la toallita de prueba en los poros de la piel. Los datos se obtuvieron y analizaron mediante el método de la cámara Antera 3D™. Se observó una reducción significativa en el número, volumen y área promedio de los poros después de la aplicación de la toallita, en comparación con las imágenes previas a la aplicación de la misma superficie de la piel.

• Volumen total de poros (mm3) V = suma de la profundidad de cada píxel * área del píxel.
• Área total de poros (mm2) = número de píxeles deprimidos * área del píxel.
• Recuento de poros = islas de depresión aisladas dentro de la región de interés seleccionada.

2.3. Evaluación de la eficacia de limpieza de los productos de limpieza en forma de toallitas contra la bacteria E. coli (NCTC 10538)

Este estudio se realizó utilizando la cepa KWIK STIK de E. coli (NCTC 10538), medios de cultivo bacterianos y 25 voluntarios humanos. Los medios de cultivo y los cultivos iniciadores bacterianos se prepararon antes de realizar las pruebas con los voluntarios.

2.3.1. Cultivo bacteriano

En total, se añadieron 30 g de caldo de triptona de soja (TSB) en polvo a 100 mL de agua destilada. La mezcla se agitó vigorosamente hasta que el polvo se disolvió por completo. A continuación, se completó el volumen con agua destilada hasta alcanzar un volumen final de 1 L. Posteriormente, el medio se esterilizó en autoclave. El medio de agar de triptona de soja (TSA) se preparó de forma similar, pero utilizando 40 g/L de TSA en polvo.

Las células de Escherichia coli (E. coli) (NCTC 10538) se inocularon inicialmente en placas de TSA y se incubaron a 37 °C durante la noche. Al día siguiente, se seleccionó una colonia y se transfirió a otra placa de TSA, que se incubó en las mismas condiciones. Al día siguiente, se seleccionó otra colonia y se añadió a 10 ml de medio TSB. Este cultivo se incubó durante la noche a temperatura ambiente con agitación. Al día siguiente, se midió la densidad óptica (DO) del cultivo con un espectrofotómetro y las células se diluyeron con medio TSB hasta alcanzar una DO de 0,15.

2.3.2. Aplicación de bacterias en el antebrazo de voluntarios

Este método se basó en las directrices descritas en BS EN 1500:2013 [ 1 ]. Se utilizaron consistentemente cultivos de caldo de E. coli con una densidad óptica (DO) de 0,15 durante todo el experimento; el número promedio de E. coli utilizado fue 1,55 × 108 UFC/mL. Se utilizó una alícuota de este cultivo para la enumeración utilizando el método de recuento en placa. Los voluntarios se limpiaron las manos y los brazos con un jabón no antibacteriano, seguido de un hisopado del área limpia, que se colocó en 1 mL de medio de solución salina tamponada con fosfato (PBS) para la enumeración mediante el método de recuento en placa (sirviendo como control). Se marcó un área de 4 × 4 cm en la piel del voluntario para la prueba. Posteriormente, se pipetearon 100 µL de cultivo de la noche a una DO de 0,15 en el área de prueba, se extendió suavemente utilizando un esparcidor en forma de L y se dejó secar al aire durante 3 min.

A continuación, se realizó el procedimiento de limpieza utilizando el producto de limpieza descrito en la Sección 2.1.2 . La toallita usada se sumergió en 10 mL de medio neutralizante Dey-Engley (D3435, Merck, Darmstadt, Alemania), se agitó en vórtex durante 60 s y se diluyó en serie dos veces con medio PBS. Posteriormente, se aplicaron 0,1 mL de las bacterias a una placa de agar para cultivo durante la noche y posterior cuantificación. Tras el proceso de limpieza, se frotó la superficie del área de prueba del antebrazo con un hisopo humedecido. El hisopo se colocó en 1 mL de medio PBS y se aplicaron 0,1 mL a una placa de agar para su cuantificación. Se aplicaron diluciones seriadas de la solución pura, 10−1 y 10−2 a una placa de agar para su cuantificación por triplicado. La cepa original de bacterias se diluyó en serie a 10⁻³, 10⁻⁴ y 10⁻⁵ y se sembró en placas de agar para el recuento de colonias. Para cada área, se calculó la UFC/mL utilizando la siguiente fórmula:

UFC/mL=(N ∗ DF)/VCCFU/mL=(N ∗ DF)/VC

donde UFC/mL = Unidades formadoras de colonias por mL:

N = Número de colonias (número total de colonias contadas en las placas dentro del rango óptimo).

DF = Factor de dilución (el recíproco de la dilución utilizada para la siembra).

VC = Volumen de cultivo sembrado (el volumen del cultivo diluido sembrado en la placa de agar). La tabla que muestra el porcentaje de bacterias eliminadas se puede encontrar en la Sección 3.3 ( Tabla 3 ).

3. Resultados

3.1. Evaluación de la eficacia de limpieza de las toallitas húmedas para eliminar material fecal simulado (Feclone™)

Se utilizó el método adaptado Antera 3D™ para evaluar la eficacia de limpieza de las toallitas de prueba en la eliminación de Feclone™ de los antebrazos de voluntarios. Los resultados se analizaron utilizando el parámetro de volumen del software Antera 3D™. El volumen se refiere al grosor o volumen total de cualquier residuo o contaminante en la superficie de la piel, y la reducción del volumen después de la limpieza indica una eliminación exitosa (véase la Figura 1 ). El porcentaje de eliminación se calculó utilizando la siguiente fórmula:

𝑠𝑣0−𝑠𝑣1⁄𝑠𝑣0×100sv0−sv1∕sv0×100

donde SV0 = Volumen de piel (mm3) con limpieza previa con Feclone™.

SV1 = (Volumen de piel (mm3) después de la limpieza - Volumen de piel (mm3) antes de la aplicación de Feclone™).

Figura 1. ( A ) Imágenes representativas que muestran la piel del antebrazo humano antes y después de la aplicación y eliminación de Feclone™ con el producto de toallitas de prueba; la toma de imágenes se realizó con la cámara de un teléfono. ( B ) Volumen de Feclone™ detectado en la superficie de la piel del antebrazo mediante el método Antera 3D™ y la limpieza con el producto de toallitas. El área de aplicación para el análisis fue de 40 mm × 40 mm. La barra de escala vertical representa el volumen y la topografía de la piel, mientras que la barra de escala horizontal se refiere a la medición 2D de la región de la piel definida. ( C ) Muestra los volúmenes de piel antes de la limpieza, con Feclone™ y después de la limpieza observados con el método Antera 3D™. Se observó que el producto de toallitas redujo el aumento del volumen de la piel inducido por Feclone™ a los niveles previos a la aplicación. Un análisis de prueba t pareada del volumen de piel residual administrado y posterior a la limpieza mostró una diferencia altamente significativa (**** p < 0,0001). La gráfica se elaboró como media con desviación estándar (DE) utilizando GraphPad Prism 10 (GraphPad Software, 225 Franklin Street, Fl. 26 Boston, MA 02110, EE. UU.). Esto representa una eficiencia de limpieza promedio del 100,92 %.

3.2. Evaluación del producto de toallitas húmedas en los poros de la piel humana

Se observó una reducción en parámetros de poros como el número total de poros, el volumen de poros y el área después de limpiar la piel del antebrazo del voluntario con el producto de limpieza ( Figura 2 ).

Figura 2. Imagen representativa del software Antera 3DTM que muestra la reducción observada en los poros detectables de la piel (cantidad, área total, volumen total) después de la limpieza con el producto de limpieza.

3.3. Evaluación de la eficacia de limpieza de los productos de limpieza en la eliminación de E. coli

También se evaluó la eficacia del producto de limpieza para eliminar la contaminación bacteriana. Se calculó el número de UFC/mL para cada área y se determinaron los promedios. Estos resultados indican que el producto de limpieza eliminó eficazmente el 99,99 % de las células bacterianas y limpió eficientemente las áreas de piel contaminadas. Esto se validó mediante la recolección de las toallitas usadas para la cuantificación bacteriana después de la limpieza, así como mediante el cultivo de muestras del área limpia en placas de TSA (véase la Figura 3 A, B).

Figura 3. ( A ) Imagen representativa que muestra la eficiencia de eliminación bacteriana de las toallitas de prueba de piel humana contaminada. ( i ) Hisopo antes de la limpieza sembrado en placa ( ii ) Toallita usada sembrada en placa ( iii ) Hisopo después de la limpieza sembrado en placa. V = voluntario, A = muestra antes de la limpieza, B = toallita después del uso, C = muestra después de la limpieza, 100 = muestra pura/sin diluir. ( B ) Gráfico de la eficiencia de eliminación bacteriana del producto de toallita usando E. coli y recuento microbiológico. Se observó que las toallitas de prueba tenían una eliminación bacteriana del 99,99% de lo que se administró. El análisis de prueba t pareada de las bacterias administradas y el recuento posterior a la limpieza mostró una diferencia altamente significativa (**** p < 0,0001). El gráfico se trazó como media con DE (desviación estándar) usando GraphPad Prism 10. V = voluntario, A = muestra antes de la limpieza, B = toallita después del uso, C = muestra después de la limpieza, 100 = muestra pura/sin diluir.

4. Debate

Este estudio tuvo como objetivo diseñar y evaluar un método alternativo para realizar estudios de eficacia de limpieza de productos de toallitas húmedas utilizando una cámara Antera 3D™, un dispositivo de imagen y análisis dérmico. Se utilizaron toallitas húmedas para bebés disponibles comercialmente (WaterWipes®) y se probó su eficacia de limpieza con materia fecal sintética (Feclone™) y E. coli contaminante de la superficie de la piel de los antebrazos de voluntarios. La cámara Antera 3D™, una herramienta validada para la evaluación de productos cosméticos [ 11 ], se ha empleado en muchos estudios cosméticos, como aquellos que implican la cuantificación de arrugas, acné y pigmentación [ 11 , 18 , 19 ], por lo que se desarrolló y probó una adaptación de la norma europea BS EN 1500:2013 [ 1 ] que incorpora la cámara Antera 3D™ para la evaluación cuantitativa y cualitativa de la eficacia de limpieza de las toallitas utilizando el producto de toallitas. El análisis objetivo de la prueba FecloneTM utilizó el parámetro de volumen del software para proporcionar una evaluación exhaustiva de la eficacia de limpieza de las toallitas.

Los resultados de la evaluación visual y el análisis con la cámara Antera 3D™ demostraron que este método era apropiado para evaluar la eliminación de Feclone™ de la piel humana mediante toallitas, que mostraron una eficiencia de limpieza del 100,92 %. Planteamos la hipótesis de que el valor de eliminación >100 % podría deberse a la sensibilidad del método de la cámara Antera 3D™ para detectar la eliminación por parte de las toallitas tanto del Feclone™ aplicado como de cualquier residuo cutáneo preexistente. Lee et al. [ 8 ] informaron de un enfoque de imagen similar para determinar la eficiencia de limpieza de las toallitas, que consiste en un ordenador con un escáner y un software de análisis de imágenes; sin embargo, este estudio se realizó utilizando un contaminante extendido sobre una placa de vidrio y no sobre piel humana. Por lo tanto, las técnicas de imagen proporcionan una alternativa al método gravimétrico tradicional utilizado para evaluar la eficiencia de limpieza de las toallitas, que se ha descrito como propenso a errores experimentales.

El método gravimétrico generalmente implica registrar el peso de la toallita antes y después de la limpieza para determinar su eficacia. Esta técnica se centra en el análisis de la toallita y no de la superficie que se limpia. Se ha informado que el método es propenso a errores derivados del proceso, como la manipulación de las toallitas durante el pesaje, lo que podría provocar la transferencia de humedad de la toallita a los guantes del evaluador y la inevitable evaporación de la humedad de las toallitas de prueba. Todos estos factores podrían afectar los resultados obtenidos y deben considerarse como variables experimentales. Sin embargo, con el método de la cámara Antera 3D™, que se basa en un enfoque óptico, la preocupación por la evaporación de la humedad y la manipulación de las toallitas es menor, ya que la eficacia de la limpieza se deduce directamente de la superficie de la piel y no a través de la diferencia de peso de las toallitas. Esto hace que este método sea potencialmente útil para abordar los errores comunes del análisis gravimétrico. Otras ventajas asociadas con los métodos propuestos de la cámara Antera 3D™ incluyen su capacidad de imagen de la piel en 3D, facilidad de uso, precisión, reproducibilidad y su lectura múltiple para parámetros de la piel como tamaño de poro, imperfecciones, arrugas y rugosidad. Sin embargo, se observan algunas limitaciones con los modelos propuestos, que incluyen incertidumbre sobre su aplicabilidad en otras áreas de caracterización de la eficiencia de las toallitas húmedas como el análisis de la velocidad de secado de la toallita (velocidad de evaporación de la humedad de la toallita cuando se expone a la atmósfera a lo largo del tiempo), el análisis de la capacidad de absorción de la toallita (capacidad de la toallita húmeda para absorber loción) y los estudios de transferencia de loción (liberación de loción de la toallita a la piel) [ 1 , 8 , 20 ]. Dado que el método propuesto utiliza un dispositivo específico, se requiere la cámara Antera 3D™ y el software asociado para realizar o reproducir el método, una limitación potencial para su aplicación generalizada. El modelo es una técnica óptica con variables tales como distancia fija, grado de resolución (0,1 mm) y banda espectral (siete) obtenible con la cámara Antera 3D™, lo que hace que la topografía de la piel reconstruida sea una estimación [ 21 ]. La sensibilidad de la técnica propuesta le permite detectar lo que está presente en la piel (vello, poros, sebo, cicatrices, pecas, etc.); sin embargo, no se espera que esto influya o cause artefactos en los datos generados, ya que el protocolo establece que primero se deben tomar lecturas de referencia de la piel.

Curiosamente, se observó que la limpieza de la piel con el producto de toallitas en cuestión tuvo un impacto en la reducción del número, volumen y área promedio total de poros, lo cual es de gran importancia, ya que varios estudios han demostrado una relación entre un menor número de poros y una piel más sana [ 14 , 22 , 23 ]. Esto probablemente se deba a la combinación de la formulación y la composición de las toallitas, donde una formulación de baja tensión superficial se extiende y humedece los poros de la piel lo suficiente como para permitir que la toallita limpie eficazmente los poros de sebo, sudor y otros residuos celulares. La reducción en el número y tamaño promedio de los poros también puede verse favorecida por la temperatura más fría de las propias toallitas. La temperatura de las toallitas parece ser más fría que la temperatura de la piel; por lo tanto, esta podría ser la razón del cierre temporal de los poros. Algunos estudios han informado que enfriar la piel conduce a una reducción en el tamaño y número de poros a través de la vasoconstricción cutánea y el tensado de la piel [ 24 , 25 , 26 ]. Además, se informa que el extracto de semilla de pomelo (GSE), un ingrediente acondicionador de la piel y un ingrediente del producto de toallitas utilizado, tiene propiedades antimicrobianas [ 27 , 28 , 29 , 30 ]. También se informa que posee actividad antioxidante y ayuda a aliviar la congestión de la piel al purificar, limpiar y despejar los poros de la piel obstruidos para una piel suave y luminosa, así como tensar los poros de la piel debido a su capacidad matificante [ 31 , 32 ]. Se propone que estas toallitas, WaterWipes® (WaterWipes UC, Drogheda, Irlanda), podrían ser útiles como una forma menos invasiva de limpiar los poros y minimizar su apariencia, dado que, en conjunto, el cambio en el área, el volumen y el número de poros después de la limpieza podría ser una combinación de todas las razones anteriores; Sin embargo, este es un tema aparte, y se necesita más investigación para validar estos hallazgos y determinar el mecanismo de acción exacto, ya que en este estudio no se tuvieron en cuenta las temperaturas de las toallitas ni de la piel de los voluntarios. No obstante, las capacidades de visualización y medición de poros de la cámara Antera 3D™ (Miravex Ltd., Dublín, Irlanda) proporcionaron información adicional sobre el efecto que el producto tiene en la piel.

5. Conclusiones

En conclusión, los resultados de este estudio demuestran que el método de la cámara Antera 3D™ puede ser una técnica alternativa eficaz para evaluar la eficiencia de las toallitas limpiadoras. Entre sus ventajas se incluyen su sencillez de uso, la reproducibilidad de los datos, la iluminación controlada en el área de la imagen interna y su portabilidad, además de contar con una alta resolución y lectura multiparamétrica. Sin embargo, dado que no se realizó ninguna comparación con otros métodos de evaluación de la eficiencia de limpieza (como la técnica gravimétrica), esta técnica propuesta pretende ser una alternativa potencial a los métodos existentes. Se observó que las toallitas utilizadas en este estudio presentaban una buena eficiencia de limpieza, logrando la eliminación sustancial de Feclone™ y E. coli de la piel humana. Futuras investigaciones podrían explorar el rendimiento de las toallitas en diferentes tipos de piel y zonas del cuerpo, así como en diversas condiciones ambientales, para ampliar su aplicabilidad y la comprensión de su eficiencia mediante el método desarrollado. En definitiva, este estudio aporta información valiosa sobre la eficacia del método de la cámara Antera 3D™ para medir la eficiencia de limpieza de las toallitas limpiadoras.

Contribuciones de los autores

Conceptualización: TY, NB, JS y EG; metodología: AAAA, AM, KH y NB; investigación y análisis de datos: AM, KH y WS; redacción del borrador original: WS; revisión y edición: WS, NB, JS, EG y TY; recursos: EG, JS y TY; supervisión: NB y TY; administración y financiación del proyecto: TY, EG y JS. Todos los autores han leído y aprobado la versión publicada del manuscrito.

Fondos

Esta investigación recibió financiación de WaterWipes UC.

Declaración del Comité de Ética Institucional

Este ensayo con voluntarios humanos se llevó a cabo de acuerdo con la Declaración de Helsinki y fue aprobado por el Comité de Ética de Investigación en Humanos de la Universidad Tecnológica de Münster (referencia MTU-HREC-FER-24-004). La gobernanza del Comité de Ética de Investigación en Humanos de la Universidad Tecnológica de Münster se describe en la Política de Ética de Investigación en Humanos de la Universidad [ 33 ] y se alinea con la Declaración de Política Nacional sobre la Garantía de la Integridad de la Investigación en Irlanda (Foro Nacional de Integridad de la Investigación (2019) [ 34 ]). Toda actividad de investigación que involucre a seres humanos como participantes en la investigación debe someterse a una revisión ética formal antes de su inicio.

Declaración de consentimiento informado

Todos los voluntarios dieron su consentimiento informado por escrito antes de participar en este estudio.

Declaración de disponibilidad de datos

Todos los datos se pueden encontrar en este artículo.

Expresiones de gratitud

Se agradece la contribución de todos los voluntarios que participaron en ambos estudios en la recopilación de datos.

Conflictos de intereses

Las autoras Jill Sommerville y Emer Gilligan trabajaban para la empresa WaterWipes UC. Los demás autores declaran que la investigación se llevó a cabo sin que existiera ninguna relación comercial o financiera que pudiera considerarse un posible conflicto de intereses.

Referencias

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